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血管生成實驗必備指南|優(yōu)化實驗方案和關鍵參數(shù)

date:2024-08-23 13:40:04

   血管形成實驗是一種簡單但功能強大的體外工具,用于篩選抗血管生成或促血管生成作用的物質。這些影響可以通過不同的參數(shù)來測量,例如管的長度或凝膠表面形成的環(huán)的數(shù)量。

  

  初始步驟通常涉及創(chuàng)建一個基底膜狀凝膠基質作為生長區(qū)域(例如,通過使用Laminin-Collagen I或Matrigel®)。接下來,將細胞接種在固化的凝膠基質上,然后進行孵育并使用光學顯微鏡采集圖像數(shù)據(jù)。隨著時間的推移,測量管的形成參數(shù)提供了有價值的數(shù)據(jù),可以揭示添加抗血管生成或促血管生成物質后管的形成特性的變化。

  

  優(yōu)化成管分析的實驗方案和數(shù)據(jù)采集方法對于獲得可靠和可重復的數(shù)據(jù)至關重要,這是正確分析的先決條件。本應用說明概述了重要的分析參數(shù)和規(guī)劃有效血管形成分析的指南。

  

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  1、規(guī)劃實驗

  

  在開始管形成和血管生成分析之前,通過經(jīng)驗測試確定較優(yōu)的實驗設置至關重要。所選擇的系統(tǒng)應與研究目標密切一致,并允許可行的數(shù)據(jù)收集。因此,建立嚴格的方案對于生成可重復和可比較的數(shù)據(jù)集至關重要。

  

  在管形成和血管生成實驗中,關鍵因素包括細胞類型、細胞密度、生長培養(yǎng)基、凝膠基質和數(shù)據(jù)采集時間點。這些因素將在接下來的章節(jié)中進一步討論。

  

  在進行實驗之前,計算所需的材料,如培養(yǎng)基、凝膠基質、物質、實驗室器具和細胞數(shù)的數(shù)量。其他需要考慮的因素包括實驗室設備、空間要求和時間安排。每個實驗都應該在相同的細胞培養(yǎng)和環(huán)境參數(shù)下進行。

  

  為了進行可靠的統(tǒng)計分析,我們建議每種情況至少有4個數(shù)據(jù)點,每種情況至少有8個單獨的孔。這導致總共至少32個單獨的實驗。實驗的次數(shù)取決于數(shù)據(jù)的同質性。在計算耗材、數(shù)據(jù)采集和數(shù)據(jù)處理時間時,應考慮這一點。

  

  1.1 細胞類型和傳代次數(shù)

  不同的細胞類型在大小、生長行為(擴散、加倍率)和對生長條件的要求上各不相同。例如,細胞大小決定細胞播種數(shù)以調整細胞密度。此外,生長培養(yǎng)基的成分可以影響促血管生成或抗血管生成作用。

  

  此外,傳代次數(shù)(P)可以影響原代細胞的行為和功能,原代細胞通常用于管形成試驗。低傳代細胞(<P6)更具有生理相關性。然而,在較高的傳代中,細胞可能會經(jīng)歷增殖能力的喪失,基因表達的改變和形態(tài)的改變,會影響結果。

  

  一個成熟可靠的實驗設置是使用低傳代(<P6)的人臍靜脈內(nèi)皮細胞(HUVECs),在不含生長因子和2%或更低血清的內(nèi)皮細胞培養(yǎng)基中生長。

  

  1.2 培養(yǎng)基成分

  細胞培養(yǎng)基是管形成試驗中的一個重要因素,提供關鍵的營養(yǎng)物質并影響細胞行為。選擇優(yōu)質培養(yǎng)基可確保細胞健康,并能準確反映生物過程。生長因子濃度和血清含量等因素在這一選擇中至關重要。

  

  在培養(yǎng)基中加入血清可能會影響管的形成行為——在大多數(shù)情況下,血清會抑制管的形成。為了避免這個問題,在實驗前應使用1.3節(jié)中定義的優(yōu)質細胞密度測試0-20%的不同血清濃度。這將決定管形成和細胞存活的優(yōu)質血清濃度。

  

  1.3 細胞密度

  凝膠表面的細胞數(shù)量是獲得管形成試驗可靠結果的關鍵參數(shù)。要確定優(yōu)質細胞播種密度,請記錄細胞系的特性。

  

  首先,在 5–40 × 103個細胞/ml的范圍內(nèi)進行稀釋。然后將細胞接種到凝膠表面。接種后,開始以30分鐘的時間間隔記錄相位對比圖像。理想情況下,每個細胞濃度執(zhí)行3-5次重復。

  

  按照第3節(jié)的描述對圖像進行評估。在這里,我們建議使用較常見的關鍵參數(shù)“總管長”。在您選擇的一個時間點(例如,4小時后),在下圖中可視化細胞播種密度與管長度的關系。數(shù)據(jù)將顯示一個具有較大值的特征曲線,這是所使用細胞類型的優(yōu)質播種密度。。此處所示的示例使用HUVEC,其優(yōu)質播種密度為 10–20 × 103個細胞/ml。

  

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HUVEC播種密度響應的示例性。該圖顯示了在播種后4小時隨細胞播種密度變化的分析管長。

  

  1.4 陽性和陰性對照

  在管生成實驗中,結合控制對于獲得有意義、可靠的結果至關重要。

  

  應使用刺激管形成的陽性對照來建立對生物活性物質反應的參考值。為了建立陽性對照,選擇一個確保管形成的實驗環(huán)境(例如,用于HUVECs的Matrigel®低生長因子和無血清培養(yǎng)基)。陽性對照驗證細胞的生命狀況,并作為任何促血管生成或抗血管生成物質的參考。陰性對照確保在細胞培養(yǎng)實驗中可以抑制管的形成。為了建立陰性對照,選擇一種被證明對管狀形成有抑制作用的物質(例如,用于HUVECs的蘇拉明)。

  

  1.5 凝膠基質

  用于管形成測定的凝膠用作基底膜樣(BM)表面,以模擬體外的自然條件。然而,凝膠的生化和機械性能顯著影響細胞行為,并影響管的形成。

  

  用于管形成分析的先進凝膠是Matrigel®或Laminin膠原蛋白I凝膠。兩種凝膠都有各自的優(yōu)點和缺點,在規(guī)劃實驗時應該考慮到這一點。

  

  Matrigel®是一種從Engelbreth Holm Swarm小鼠肉瘤中提取的天然即用型BM溶液。然而,一個缺點是癌癥環(huán)境中生長因子的定義不清且成分可變。這導致不同批次之間的機械和生化性能波動,從而改變管的形成特性。因此,當使用Matrigel®時,所有實驗都應使用同一批次的Matrigel®進行。

  

  相比之下,雙組分層粘連蛋白-膠原I凝膠被認為具有更明確的基質組成。但是,它并不包括BM的所有天然成分。

  

  2、成像

  

  成像在管形成分析中起著關鍵作用,因為它可以詳細觀察和分析血管生成效應。通常,相差顯微鏡用于可視化細胞動力學,而不需要染色。管形成分析即可以作為時間序列進行,以確定形成的動態(tài)行為,也可以作為終點實驗,在一定時間后固定細胞進行成像。

  

  2.1 選擇優(yōu)質的物鏡

  由于管的形成是在整個載玻片孔的表面區(qū)域,因此建議觀察盡可能大的視場角(FOV)建議,以獲得較大的信息量。FOV可以通過改變物鏡的放大倍數(shù)來改變——使用4x到10x物鏡的低放大倍率對于大多數(shù)管形成實驗來說是足夠的。

  

  Tips:視場(FOV)與圖像分辨率間接相關。使用低倍率物鏡(2-10倍)將導致低分辨率的大視場。相比之下,使用高倍率物鏡(20倍或更高)將導致較低的視場,但具有較高的分辨率。

  

  如果需要高分辨率的大視場,建議采集后對單幅圖像進行拼接掃描。

  

  2.2 延時成像對于延時成像和活細胞成像,需要維持一個穩(wěn)定的生理環(huán)境,以確保細胞的自然行為,使用ibidi Stage Top Incubators可以實現(xiàn)這一點。在凝膠表面播種細胞后,立即將載玻片或培養(yǎng)皿置于顯微鏡上適當?shù)姆跤抑?,并開始時間序列。可能需要對每個時間步驟進行焦點調整,這可以手動或使用基于軟件的工具完成。

  

  如果您的顯微鏡沒有孵育室,請在獲取圖像后立即將樣品放入細胞培養(yǎng)箱中。在這種情況下,盡量縮短成像時間(例如,盡量縮短培養(yǎng)箱和顯微鏡之間的距離),以避免樣品中的溫度波動。

  

  在進行延時成像時,時間間隔和總成像時間取決于所使用的細胞系和實驗條件。例如,第一種方法可能是在24小時內(nèi)以15-30分鐘的時間步長進行成像。然后,應該調整第一次實驗的時間序列參數(shù),以找到較優(yōu)的時間步長。因此,通過可視化一個關鍵參數(shù)(例如,管總長度,見第3節(jié))與時間的關系來分析時間序列,如下圖所示。該參數(shù)的時間曲線與細胞有關,這里展示了在Matrigel®上生長的HUVEC細胞的示例。在這里,時間曲線通常上升到緩慢平坦(>20小時)。應定義一個信號高且穩(wěn)定的時間點進行分析。在下面的例子中,當使用在Matrigel®上生長的HUVEC細胞時,建議的測量時間點在4到5小時之間。

  

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  在Matrigel®上以15分鐘的時間間隔生長超過24小時的HUVEC細胞的時間序列。這里,從每個時間步長計算出作為管形成代表參數(shù)的總管長度。該參數(shù)的曲線通常會上升到較大值(此處為~4小時),然后下降到平穩(wěn)階段(此處為~7小時后),逐漸緩慢變平(此處為>20小時)。

  

  3、管形成和血管生成分析的輸出參數(shù)

  “管”一詞描述的是在二維網(wǎng)狀系統(tǒng)中可見的細胞索。具體來說,這并不意味著細胞索有管腔。在管形成分析中,可以從相位對比圖像中確定四個關鍵參數(shù),如下圖所示。

  • 細胞覆蓋面積[%] (藍色區(qū)域)

  • 管長 [px] (紅線)

  • 分支點數(shù) (白點)

  • 環(huán)路數(shù) (黃色數(shù)字)

  

  這些關鍵參數(shù)在實驗過程中顯示出相互一致的關系。因此,只需確定一個特征就足夠了:在本應用說明中,將只使用管的長度作為管形成的代表性值。

  

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  相位圖像(A)和分析圖像(B)顯示了管形成分析的關鍵特征:細胞覆蓋面積(藍色)、管(紅色)、環(huán)路(黃色)和分支點(白色)。

  

  根據(jù)這些參數(shù),可以計算出其它值,如平均管長、總管長和環(huán)的平均面積。

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