date:2022-06-23 13:09:49
1、哪種細胞密度最適合我的實驗？
通常，我們建議每孔使用5,000-10,000個HUVEC。 但是，確定最佳細胞數對于使用µ-Slide血管生成從管形成測定中獲得最佳結果是至關重要。 細胞密度取決于細胞類型和細胞大小。 因此，在開始實際實驗之前，我們建議在非抑制條件下播種幾個細胞數并對管形成進行成像。 然后，對于最佳測定條件，使用在您的實驗中產生最多管數的細胞密度。請記住，細胞通常不會在凝膠基質上增殖。請參閱：血管生成實驗實驗裝置優化和數據分析 |ibidi µ-Slide
2、應該在哪個時間段內觀察細胞？
管形成的持續時間取決于細胞類型和所使用的細胞外基質，應單獨確定。 通常，HUVEC在 2-4小時后已經形成管。24小時后細胞開始發生凋亡，這導致從基質中脫離和管破裂。請參閱：血管生成實驗實驗裝置優化和數據分析 |ibidi µ-Slide
3、是否需要活細胞成像裝置來每小時拍攝管形成測定的照片？
非必須，通過顯微鏡對 µ-Slide 血管生成上的同一位置進行一致和精確的成像。 可以使用顯示 x/y 坐標的顯微鏡載物臺或自動載物臺來完成成像。 使用自動化平臺，可以將孔的所有位置（特別是每個孔的中心）保存到位置列表中，您可以在每個時間點訪問相應的位置。
但是，使用完整的活細胞成像設置在顯微鏡上建立生理條件要方便得多。使用ibidi Stage Top 孵育系統等活細胞孵育裝置有助于在成像過程中提供穩定溫度和濕度條件，從而在體外可以直接進行視頻拍攝。
4、是否可以使用 µ-Slide 血管生成在凝膠基質內培養細胞？
可以，µ-Slide 血管生成非常適合在精確定義的3D基質中培養細胞。由于大界面的凝膠和頂部細胞培養基，凝膠中的條件可以通過更換上部儲液器中的介質來調整。
5、應該在管形成實驗中使用含酚紅的凝膠還是不含酚紅的凝膠？
對于使用µ-Slide血管生成的管形成測定中的相差顯微鏡，酚紅不會干擾圖片，并且由于其顏色，處理更容易。然而，當使用熒光顯微鏡時，酚紅可能會干擾探頭的波長。在這種情況下，最好使用無酚紅凝膠。
6、是否需要將µ-Slide Angiogenesis血管生成載玻片放入培養箱的濕室中進行凝膠聚合？
我們建議將µ-Slide血管生成載玻片放入加濕腔中進行凝膠聚合。 雖然反應室對于聚合本身不是必需的，但它可以最大限度地減少蒸發的影響。 在高流量孵化器中，防止蒸發的足夠百分比的濕度可能不會始終保持一致。 µ-Slide血管生成中的少量凝膠會很快變干，這會導致彎液面的形成。
7、胎牛血清 (FBS) / 胎牛血清 (FCS) 濃度是否會影響管形成實驗中的管形成和降解速率？
一般是的。 這取決于所使用的細胞類型或細胞系。 當提供濃度高達 10% FCS 的細胞培養基時，我們在 µ-Slide 血管生成中觀察到典型的原代細胞 (HUVEC) 管形成和 Matrigel® 上的幾種內皮細胞系。 但是，我們建議分別優化每個細胞系的 FBS/FCS 濃度。
8、您是否推薦使用減少生長因子的 Matrigel® 進行管形成分析？
對于使用µ-Slide血管生成的管形成測定，我們使用了減少生長因子的 Matrigel® 和未減少的 Matrigel®。請參閱：腫瘤學必備 | 血管生成實驗介紹
9、我們希望使用減少了生長因子的 Matrigel® 和無血清培養基以及 50 ng/ml VEGF。 這足以刺激管的形成嗎？
可以，這種組合足以刺激ibidi血管生成實驗室器皿中的管形成，而培養基中沒有任何額外的生長因子。
10、除了 Matrigel® 之外，您在試管形成實驗中是否有使用其他凝膠的經驗？
原則上，任何凝膠都可用于µ-Slide血管生成管形成實驗。 細胞可以附著在表面上是很重要的。 膠原蛋白、纖連蛋白和層粘連蛋白為細胞粘附提供了重要的結合基序。
11、什么是管形成實驗合適的陽性和陰性對照？
建議使用陽性和陰性對照來減少管形成實驗中的變量。陽性對照是預期細胞在其中形成血管的樣本（取決于實驗設置），從而向研究人員表明該實驗已正確進行。陰性對照是與所有其他樣品以相同方式處理的樣品，但預計不會顯示任何實驗結果（例如，很少或沒有管形成）。
ibidi血管生成實驗室器皿中管形成實驗的最佳陽性和陰性對照很大程度上取決于所使用的細胞、凝膠基質和一般實驗設置。因此，我們建議您查閱文獻，了解您感興趣的主題中成功使用的對照（陽性和陰性對照）。
在下文中，您可以找到管形成測定中陽性和陰性對照的可能方法：
如果需要分析特定化合物誘導血管生成的效力，則可以使用用已知血管生成誘導劑（例如 VEGF 或 FGF2）處理的樣品作為陽性對照。濃度很大程度上取決于細胞類型和實驗設置。
如果使用原代細胞，預篩選的內皮細胞系（例如，HUVEC）在用特定生長因子處理后表現出明確的反應，可以作為陽性對照。
對于某些細胞類型，形成管的能力還取決于所使用的凝膠基質。作為陽性對照，內皮細胞應在含有饑餓培養基（不含生長因子或血清的培養基）的生長因子減少的 Matrigel®上顯示管形成。如果需要測試促血管生成物質，則使用饑餓培養基尤其重要，因為大多數細胞培養基都添加了生長因子。為了分析物質的真實效果，基質和培養基都必須不含任何生長因子。作為陰性對照，細胞可以播種在不同的基質（例如膠原蛋白 I）上，預計不會形成管狀。
不影響細胞活力的管形成抑制劑（例如，蘇拉明或蘿卜硫素）可用作陰性對照。如果實驗的目的是測試抗血管生成物質，則使用這種類型的抑制劑尤其重要。
如果用任何溶解的物質（例如，在 DMSO 或乙醇中）處理細胞，則僅使用溶劑作為陰性對照。
12、是否有用于分析管形成實驗的推薦染色方案？
一般來說，相差顯微鏡足以自動分析 µ-Slide血管生成中的標準管形成實驗。 但是，如果您想研究某種標記，您可以應用您的標準方案（例如，用于免疫熒光染色），但要小心，以免損壞凝膠基質或細胞網絡。
使用calcein的染色方案示例可參閱：腫瘤學必備 | 血管生成實驗介紹
13、在開始實驗之前，我是否必須將 ibidi 血管生成實驗室器皿平衡到 37°C？
不，不需要平衡 µ-Slide 血管生成。 在室溫下儲存，可以立即用凝膠基質填充。 由于µ-Slide 的開孔形式，加熱時從凝膠中逸出的氣體可以與大氣自由交換。
14、完成實驗后，µ-Slide Angiogenesis和µ-Plate Angiogenesis 96 Well可以重復使用嗎？
不可以，µ-Slide血管生成載玻片和µ-Plate血管生成96孔板是一次性耗材，僅供一次性使用。
15、µ-Slide 血管生成是否有96孔版的？
有。 µ-Plate血管生成96孔板具有與µ-Slide血管生成相同的“孔中孔”設計和凝膠體積 (10 µl)。 µ-Plate血管生成96孔可用作高通量管形成實驗的篩選板，具有完全的ANSI/SLAS (SBS) 和robotics兼容性。
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